(495)660-37-08

(499)177-51-10

еще телефоны >>

(499)177-51-10

(499)177-51-75

(800)550-37-08

бесплатная линия!

КАТАЛОГ


Сбор и транспортировка проб  RSS 2.0

Предыдущая запись     Следующая запись
Сбор и транспортировка проб

При взятии материала для проведения микробиологического исследования необходимо придерживаться следующих правил.

  • · Брать материал до начала антибактериальной терапии или ког­да содержание введенного в организм препарата становится ми­нимальным (обычно перед введением следующей дозы антибиотика).
  • · Брать материал непосредственно из очага инфекции или иссле­довать биопробы, отражающие воспалительный процесс в тех или иных органах или системах (например, бронхиальный сек­рет при пневмониях, мочу при урологической инфекции и т.д.).
  • · Соблюдать асептику, избегая контаминации пробы посторонней флорой.
  • · Использовать стерильные ватные тампоны (для отделяемого из раны, мазков со слизистых оболочек, из глаза, уха, носа, зева, цервикального канала, влагалища, анального отверстия) и транс­портные среды, шприцы (для кропи, гноя, экссудатов), контейне­ры или лабораторную посуду (для мокроты, мочи, фекалий).
  • · Биоматериалы для культивирования строгих анаэробов следует транспортировать в лабораторию, максимально защищая их от воздействия кислорода воздуха. Для жидких проб (кровь, гной, экссудат) используют специальные флаконы со средой, заполнен­ные инертным газом, куда из шприца уколом иглы через резино­вую плотно завальцованную крышку вносят исследуемый мате­риал. Материал можно транспортировать прямо в шприце, на кончик которого надета стерильная пробка или загнутая под уг­лом игла. Можно использовать специальные коммерческие там­поны с транспортной средой.
  • · К материалу, направляемому в лабораторию, прилагают сопро­водительный документ, где указывают необходимые для прове­дения исследования сведения (характер материала, дату и время его взятия; ФИО, пол и возраст больного; название учреждения, отделения, палаты; номер истории болезни; предполагаемый ди­агноз заболевания и предшествующую антимикробную терапию; фамилию и подпись врача, направившего материал на анализ).
  • Количество материала должно быть достаточным для проведе­ния исследования.
  • Транспортировку нативного материала в лабораторию необходи­мо производить в максимально короткие сроки (для большинства образцов не более 1,5-2 ч). Если образцы нельзя доставить в ла­бораторию немедленно, допускается их хранение в холодильни­ке при +4°С не более 6 ч (это не относится к ликвору и крови). Использование транспортных сред удлиняет сроки хранения ма­териала до 24 - 48 ч. Материал для микробиологического иссле­дования транспортируют в специальных биксах, пеналах и т.п.

В ряде случаев необходимо соблюдать дополнительные условия хра­нения и транспортировки образцов с учетом биологических особеннос­тей предполагаемых возбудителей инфекции (табл.).

Таблица.

Условия хранения и транспортировки образцов для разных групп бактерий.

Микроорганизмы

Комментарий

Аэробные

грам(+) кокки

Streptococcus

pneumoniae

Подвержены спонтанному аутолизу и гибели клеток при

хранении проб в холодильнике или задержке сроков

проведения посевов.

Прочие кокки

Менее прихотливы, большинство из них устойчиво к

высыханию и колебаниям температуры.

Анаэробные,

грам (+) кокки

Peptostreptococcus spp.

Высоко чувствительны к действию кислорода, поэтому

пробы следует помешать в анаэробные контейнеры сразу

же после их получения и содержать во влажной атмосфере

в течение всего срока до начала проведения анализа.

Анаэробные,

грам(-) кокки

Важно соблюдать обычные предосторожности при взятии

материала для анаэробного культивирования.

Аэробные,

грам(-) кокки

Neisseria spp.

Чрезвычайно лабильны, поэтому пробы немедленно транспортируют в

лабораторию, избегая чрезмерного перегрева и охлаждения. Ликвор можно

хранить в течение нескольких часов в термостате при температуре 37°С или

в термосе, в котором его и доставляют на исследование. Носоглоточную

слизь на наличие менингококков можно засеять на чашки Петри с

питательной средой сразу на месте взятия или погрузить тампон в

пробирку с транспортной средой с линкомицином (при транспортировке

более 3-х часов), либо средой обогащения, либо ее берут тампоном,

смоченным в питательной среде. Засеянные чашки транспортируют,

применяя в осенне-зимнее время грелки (35-40°С), а затем немедленно

помещают посевы в термостат. Пробы, исследуемые на наличие гонококков,

лучше сразу инокулировать в среду выделения после их взятия. Среду

предварительно согревают, а засеянные чашки помещают в СО2 анаэростаты

или специальные пластиковые пакеты, и транспортируют в лабораторию.

При посеве крови не следует использовать среды, содержащие

полианитолсулъфонат в качестве инактиватора некоторых антибиотиков,

так как он подавляет рост нейссерий.

Аэробные,

грам(+) палочки

Corynebacterium

diphtheriae

Тампоны должны быть доставлены в лабораторию не позднее 3-х часов после взятия материала. Если посевы будут производиться позже - рекомендуется засевать материал на полужидкую транспортную среду с теллуритом. При транспортировке на дальние расстояния можно использовать тампоны, предварительно смоченные 5% раствором глицерина.

Gardnerella spp.

I

При посеве крови не следует использовать среды, содержащие полианитолсульфонат, так как он подавляет рост гарднерелл.

Listeria spp.

Способны к размножению при 4°С, поэтому для накопления листерий пробы можно хранить в холодильнике.

Анаэробные, грам(+) палочки

Важно соблюдать обычные предосторожности при взятии материала для анаэробного культивирования.

Actinomyces spp.

Если в материале присутствуют друзы (каменисто-плотные комочки), их переносят стерильной петлей или пинцетом на предметное стекло, аккуратно раздавливая друзы. Приготовленный препарат окрашивают по Граму и микроскопируют под малым увеличением для обнаружения нитевидных палочек. Раздавленные друзы также могут быть засеяны на соответствующую среду.

Clostridium spp

Большинство клостридий относительно легко культивируются, если в материале содержатся споры. Но некоторые виды (Clostridium difficile, C.tetani и C.botulinum) бывает трудно выделить без скрупулезного методического подхода. Например, кал для исследования на цитотоксины C.difficile можно хранить 1 при 4°С до 3-х дней или при -70°С более длительный срок (его не следует хранить при -20°С).

Campylobacter spp

Исследуют свежий кал в течение 1 часа (изучение ректальных мазков возможно, но не рекомендуется) или используют среду Cary-Blair. Пробы можно хранить при 4°С.

Enterobacte-

riaceae

(Salmonella,

Shigella spp., и

патогенные

штаммы

Escherichia coli,

Yersinia

enterocolitica).

Исследуют свежий кал в течение 1 часа после получения пробы, либо применяют транспортную среду, среда Cary-Blair лучше всего подходит для этих целей, но можно использовать и другие среды (Stuart, Aimes, буферный раствор глицерина).

Francisella spp.

Пробы не требуют специальных условий транспортировки кроме соблюдения правил противоинфекционного режима.

Helicobacter spp.

Высокочувствительны к высыханию. Пробы собирают путем множественной биопсии антральной области и тела желудка и инокулируют их в стерильный солевой раствор или транспорт­ную среду Stuart

Legionella spp.

Не требуется специальных условий хранения проб. Для иссле­дования необходимо не менее 1 л воды, куда добавляют 0,5 мл 0,1 N тиосульфата натрия. Пробы с водопроводных кранов и душевых установок можно брать влажными тампонами, поме­щая их в контейнеры с 3-5 мл воды.